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培养实例2和对比培养例2的培养结果比较：兰兹贝格型拟南芥种子在1/2cs生长培养基和1/2ms生长培养基上的萌发率均为100％；在相同条件下培养28d时，与1/2ms生长培养基相比，1/2cs生长培养基中的幼苗长势更佳，在平均株高、莲座叶大小、根长、花朵数量等方面均优于1/2ms生长培养基；并且，采用上述培养方法，不论是1/2cs生长培养基还是1/2ms生长培养基，均能获得形态完整的花粉，且花粉活力高达％，其特点在于选择了兰兹贝格型拟南芥作为培养对象，且选择了高度适中的培养盒进行培养，克服了传统培养方法无法获得拟南芥整个生育期无菌苗的缺点，所获无菌花***可直接用于花*离体培养等研究内容。如图2所示。培养实例3：油菜无菌苗培养与培养实例1不同的地方在于：步骤(1)所用种子为中双11号油菜种子，其余完全同培养实例1。1/2cs生长培养基的培养结果为：中双11号油菜种子在1/2cs生长培养基上的萌发率为100％，培养9d的幼苗，表现为植株健壮、平均株高为，叶色浓绿，茎秆粗壮、平均茎中粗为，根系发达、平均根数为(>)、平均主根长为。如图3所示。对比培养例3：将1/2cs基本培养基替换为1/2ms基本培养基，其余完全同培养实例3，1/2ms基本培养基的成分及用量如表1所示。减血清培养基减少了血清中的未知因素对细胞的影响。山西DMEM高糖培养基产品介绍
愈伤**诱导率为100％。如图6所示。对比培养例6：将cs基本培养基替换为ms基本培养基，其余完全同培养实例6，ms基本培养基的成分及用量如表1所示。ms诱导培养基的诱导结果为：本氏***叶片愈伤**诱导时，培养15-18d的叶片略微增厚，在叶片四周产生较少的淡绿色愈伤**，愈伤**诱导率为90％，在愈伤**团块上产生的嫩绿色不定芽数量较少；本氏***根愈伤**诱导时，培养9-11d在切口处产生大量淡黄色致密的愈伤**，愈伤**诱导率为100％。如图6所示。培养实例6和对比培养例6的诱导结果比较：用上述方法进行本氏***叶片愈伤**诱导时，cs诱导培养基愈伤**诱导率为100％，而ms诱导培养基的诱导率*为90％，在所述相同培养条件下，与ms诱导培养基相比，cs诱导培养基可更快诱导出大量致密的叶片愈伤**、产生更多的不定芽；用上述方法进行本氏***根愈伤**诱导时，cs诱导培养基与ms诱导培养基诱导出的根愈伤**形态相近，两种培养基的根愈伤**诱导率均为100％。如图6所示。培养实例7：水稻成熟胚愈伤**诱导(1)水稻种子消毒及筛选：a、选种：以籼稻缙恢10号为例，将水稻种子晾晒干燥后于4℃下长期保存，挑选籽粒饱满、大小基本一致的水稻种子，用剪刀从种子中部剪开，去除谷壳。湖北DMEM/F12培养基常用知识无血清培养基有助于维持细胞的纯净生长环境。
所描述的实施例**是本申请一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本申请中的实施例，本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都应当属于本发明保护的范围。实施例1一种优化的谷氨酸发酵培养基，其包括发酵培养基a和发酵培养基b；所述发酵培养基a首先添加，然后间隔24h添加发酵培养基b。所述发酵培养基a的制备方法为：取各原料：葡萄糖80g/l，酵母浸膏20g/l，k2hpo42g/l，mgso4·7h2o50mg/l，2-羟基乙胺40mg/l，cecl310mg/l，mnso4·h2o3mg/l，feso4·7h2o3mg/l，vb110mg/l，生物素7μg/l；将各原料搅拌均匀后，调节ph为，121℃**15min，自然冷却，制得发酵培养基a；所述发酵培养基b的制备方法为：取各原料：琥珀酸5g/l，尿素2g/l，壳聚糖80mg/l；将各原料搅拌均匀后，调节ph为，121℃**15min，自然冷却，制得发酵培养基b；采用常规发酵工艺：将黄色短杆菌gdk-9按8％接种量将种子液（od600nm为）接入装有60l发酵培养基a的100l发酵罐中进行发酵培养，发酵培养24h，然后添加10l发酵培养基b，继续发酵培养24h，收集发酵液；整个发酵培养过程中，控制发酵温度35℃，通风比1∶，搅拌转速300r/min，溶氧维持在20％。
水解乳蛋白是乳白蛋白经蛋白酶和肽酶水解的产物，含丰富的多肽、氨基酸和碳水化合物。一般配制成（采用平衡盐溶液溶解）与合成培养基（如MEM细胞培养基）以1:1的比例混合使用。目前用于细胞培养的血清主要是牛血清，培养某些特殊细胞也用人血清、马血清等。牛血清对绝大多数哺乳动物细胞都是适合的，但并不排除在培养某种细胞时使用其他动物血清更合适。血清中含有各种血浆蛋白、多肽、脂肪、碳水化合物、生长因子、***、无机物等，这些物质对促进细胞生长或**生长活性是达到生理平衡的。此外，血清含一些对细胞产生毒性的物质，如多胺氧化酶，能与来自高度繁殖细胞的多胺反应（如精胺、亚精胺）形成有细胞毒性作用的聚精胺。补体、抗体、*****等都会影响细胞生长，甚至造成细胞死亡。目前，血清多作为一种添加成分与合成培养基混合使用，使用浓度一般为5~20%，**常用是10%。由于水解乳蛋白和血清成份复杂，批间差异大及存在**等外源污染风险，对下游生物制品的分离纯化和安全性都存在较大的影响，在生物制*行业的使用也越来越少。因此，基于对血浆成份的分析，合成细胞培养基应运而生。合成培养基是根据天然培养基的成分，用化学物质模拟合成、人工设计、配制的培养基。MEM培养基常用于多种哺乳动物细胞的体外培养。
这些重组蛋白和动物来源成分对生物制品的安全性有很大影响。成本低。主要用途应用案例采用199(SLM)、MEM(SLM)和DMEM（SLM）低血清培养基分别培养Vero细胞、BHK21细胞和CHO细胞，新生牛血清用量可以从10％降至3％，减少新生牛血清使用批次和批间差的影响，减少生物制品纯化损失，减少由于不确定蛋白或者其它血清组分带来干扰和差异的风险，提高制品安全性。低血清培养基可以在方瓶、3L转瓶、15L转瓶及生物反应器中培养细胞，在*苗生产中可以达到低血清高密度的培养效果。低血清培养基营养成分优于基础培养基，易使细胞增殖迅速，代谢旺盛，代谢产物对细胞有不良影响，易产生细胞老化脱落现象。因此需要适当增加换液次数，增加传代频率。获取同样的细胞量，用低血清培养基将比用传统培养基缩短近1/3的时间，可提高生产效率。采用199(SLM)低血清培养基培养Vero细胞分泌狂犬*苗病毒，滴度明显高于采用199培养基传统培养获得的滴度。采MEM(SLM)低血清培养基BHK21细胞，在本实验情况下12代内细胞形态和致密度均优于MEM培养基传统培养情况，因而可以预期其产生的口蹄*、甲肝等*苗生产的病毒产量将提高。低血清培养基用于反应器Vero细胞狂犬*苗的生产，实践证明效果良好。采DMEM。DMEM培养基提供了细胞生长所需的基本营养成分。上海DMEM/F12培养基有哪些
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文献2“混合硝酸稀土对谷氨酸产生菌的影响，氨基酸杂志”发现，在发酵培养基中添加一定量的稀土元素，能够提高谷氨酸的产量。申请人之前的**技术“一种谷氨酸发酵培养基制备方法”，在常规培养基的基础上进行了改进，通过添加菌体蛋白浸膏来替代酵母膏氮源，不但节约了成本，还能提高氨基酸发酵产率，一举两得。技术实现要素：在已有发酵培养基的基础上，申请人针对微生物发酵的特点，继续进行了改进，以提高发酵效率，据此，提出了一种优化的谷氨酸发酵培养基。本发明是通过如下技术方案来实现的：一种优化的谷氨酸发酵培养基，其包括发酵培养基a和发酵培养基b；所述发酵培养基a首先添加，然后间隔12h以上添加发酵培养基b。进一步地，所述发酵培养基a的制备方法为：取各原料：葡萄糖，酵母浸膏，k2hpo4，mgso4·7h2o，2-羟基乙胺，cecl3，mnso4·h2o，feso4·7h2o，vb1，生物素；将各原料搅拌均匀后，调节ph，**，制得发酵培养基a。进一步地，所述发酵培养基b的制备方法为：取各原料：琥珀酸，尿素，壳聚糖；将各原料搅拌均匀后，调节ph，**，制得发酵培养基b。推荐地，所述发酵培养基a的制备方法为：取各原料：葡萄糖50-100g/l，酵母浸膏10-30g/l，k2hpo41-5g/l。山西DMEM高糖培养基产品介绍
